Informatie

Enig idee wat deze rode plant is?

Enig idee wat deze rode plant is?


We are searching data for your request:

Forums and discussions:
Manuals and reference books:
Data from registers:
Wait the end of the search in all databases.
Upon completion, a link will appear to access the found materials.

Ik woon in Zuid-Centraal Indiana, VS, en deze zijn net begonnen te verschijnen in het gras in mijn tuin. Ik heb dit huis pas afgelopen herfst gekocht, dus ik heb ze nog nooit gezien. Weet iemand wat ze zijn? Zijn ze schadelijk voor honden?


We noemden die "Indiase aardbeien". Ze zijn ook bekend als Mock Strawberry (Duchesnea indica). Survivalisten zijn redelijk bekend met deze plant.

Ze lijken qua uiterlijk veel op aardbeien, maar de bes is ronder, niet puntig en rechtop (ze wijzen naar boven) op de stengel, niet hangend. Hoewel de bessen eetbaar zijn, hebben ze helemaal niet veel smaak. De bladeren zijn ook vergelijkbaar en de bloem is geel, niet wit. De zaden van de vrucht hebben dezelfde kleur als de vrucht. Ze bloeien in het late voorjaar en de hele zomer. Je exemplaar ziet eruit alsof er ooit aan geknabbeld is. De binnenkant van deze bes is wit en een beetje sponsachtig en droog (vooral in vergelijking met de echte, dat wil zeggen wilde aardbeien.) De stengel waaraan hij zit is harig (zoals het hoort) maar beschadigd, en slechts een deel van de bijsluiter is zichtbaar op je foto.

Ze behoren tot de Rose-familie, maar er is enige discussie over tot welk geslacht ze eigenlijk behoren; lijkt misschien meer op Potentilla.

Zie ook http://www.sierrapotomac.org/W_Needham/IndianStrawberry_080617.htm


Symptomen van virusinfectie in planten

Dit zijn de eerste symptomen en zijn het resultaat van een lokale reactie op de plaats van inenting. Deze symptomen verschijnen in de vorm van lokale laesies en het opruimen van aderen. De lokale laesies verschijnen als gevolg van de dood van de cellen van een klein gebied op het inoculatiepunt. Bij aderopruiming worden de nerven van het jonge blad opvallend door opheldering of chlorose van weefsel in of ernaast.

(b) Systemische symptomen:

Hierbij zijn de meeste delen of de hele plant betrokken.

De belangrijkste systemische symptomen zijn:

Het wordt gekenmerkt door de ongelijke verdeling van chlorofyl in gele en groene vlekken op het blad. Deze vlekken zijn onregelmatig verdeeld over normale groene weefsels en vormen een mozaïekpatroon. Dit is het meest voorkomende symptoom en wordt veroorzaakt door verschillende virussen, bijv. mozaïek van komkommerachtigen, mozaïek van aardappel, mozaïek van suikerriet en tabaksmozaïek (Fig. 1) enz.

In dit symptoom vindt uniforme chlorose van de bladeren plaats, bijvoorbeeld rijstgeel.

(iii) Necrose (afsterven van cellen):

Bij dit soort symptomen stort het geïnfecteerde deel van de plant, de groep cellen in, wordt bruin en sterft af. Het komt in verschillende vormen voor. Sommige virussen tasten het weefsel aan op het punt van inoculatie door een plaatselijke afbraak te veroorzaken, dit staat bekend als lokale necrose. Soms omvat necrose parenchym en aderen van bladeren en wordt dit streep genoemd. Een snelle doding van de knop of tak van de hele top van de planten staat bekend als topnecrose, bijv. Tabaksnecrose, Tomatenstreep enz.

Op geïnfecteerde bladeren verschijnt dit symptoom op gelokaliseerde plekken. Deze vlekken bestaan ​​uit verschillende soorten chlorose en necrose. De vlekken kunnen cirkelvormige chlorotische gebieden zijn en worden chlorotische ringvlekken genoemd. In andere gevallen kan de necrose verschijnen in ringen afgewisseld met normale groene gebieden. Dergelijke vlekken worden necrotische ringvlek genoemd, bijvoorbeeld Tabaksringvlekziekte.

Het is een veel voorkomend symptoom van virusziekten. Dit symptoom wordt gekenmerkt door de verandering in de symmetrie van de bladrangschikking, het rimpelen van de randen van het blad, het rollen van het blad en het opnieuw instellen van het blad, bijv. bladrol van aardappel, bladkrul van papaja, bladkrul van tomaat enz. Soms worden de bladeren verminderd in grootte, aan de internodiën en er is productie van een cluster van vervormde scheuten. Het wordt heksenbezem genoemd.

Dit symptoom wordt gekenmerkt door de vermindering van de grootte van de bladeren, vruchten, bladstelen en internodiën, bijvoorbeeld Bonengeel mozaïek, Knoestige bovenkant van banaan enz.

(vii) Breken en vergroenen van bloesems:

Dit symptoom wordt gekenmerkt door de aantrekkelijke schakering van bloemkleur. Dit wordt het breken van de bloemkleur genoemd, bijv. Tulp, Abutilon enz. Soms worden bloembladen groen als gevolg van een virusinfectie en wordt dit virescentie genoemd.

Haarachtige uitgroei verschijnt op de bladeren en stengels enz. Deze uitgroei staat bekend als entations, bijvoorbeeld Dolichos entation-mozaïek.

(ix) Productie van uitgroei:

Verschillende soorten abnormale gezwellen zoals tumoren, zwellingen en heuvels verschijnen op geïnfecteerde delen, bijvoorbeeld Fiji-ziekte van suikerriet, Tobacco Leaf Curl-ziekte, enz.

Geïnfecteerde planten vertonen het drogen van zijwortels, overproductie van tumoren en gallen in wortels, bijvoorbeeld wondtumorziekte van Pea.

Interne symptomen van virusinfectie:

Deze zijn van twee soorten:

(a) Histologische symptomen:

Geïnfecteerde planten vertonen verminderde groei en differentiatie.

Geïnfecteerde planten vertonen overmatige groei en abnormale ontwikkeling van weefsels als gevolg van een toename van het aantal cellen.

De dood van de cellen of weefsels vindt plaats en er kunnen ook enkele andere histologische veranderingen worden waargenomen. Floëemcellen degenereren of sterven af, callose-afzetting vindt plaats op de floëemzeefplaten. Tylosen worden gevormd in de xyleemelementen. De xyleemelementen ontwikkelen karakteristieke, aangeduide strengen die bekend staan ​​als endocellulaire cordons.

(B) Cytologische symptomen:

Het belangrijkste cytologische symptoom van virusinfectie is de ontwikkeling van intracellulaire inclusielichaampjes, die van twee hoofdtypen (a) kristallijne en (b) amoebe-achtige amorfe lichamen zijn. Deze laatste worden ook wel X-lichamen genoemd. De exacte aard van deze lichamen is niet bekend.

Deze lichamen komen vaak voor in de epidermale cellen van bladeren en stengels. Ze zijn ook aanwezig in wortels, bloemen en in de meeste weefsels, behalve het floëemzeefelement. De lichamen zijn gemeld in planten die zijn geïnfecteerd met TMV, Tabaksringvlek, Raapgeelmozaïek, Aardappelvirus en Hyosyamus-mozaïekvirus enz.

In veel gevallen zijn de symptomen van de geïnfecteerde planten te wijten aan synergetische of gecombineerde werking van twee of meer virussen. Rugose-mozaïek van aardappel is bijvoorbeeld het gevolg van infectie door twee virussen, namelijk aardappelvirus X en aardappelvirus Y.


Abstract

  • VanCleave, J. 1993. Janice VanCleave's A+ Projects in Biology. New York, NY: John Wiley & Sons, Inc. Afdrukken.
  • Vecchione, G. 2001. 100 bekroonde Science Fair-projecten. New York, NY: Sterling Publishing. Afdrukken.
  • Koning, R. (n.d.). Zaadkieming. Website met informatie over plantenfysiologie. Ontvangen 28 februari 2012, van http://plantphys.info/seedg/seed.html
  • Kennell, H. (2007, februari). Zaad starten. Washington State University: Snohomish County-uitbreiding. Ontvangen 29 oktober 2014, van http://ext100.wsu.edu/snohomish/wp-content/uploads/sites/11/2012/11/9SeedStarting.pdf
  • Hangarter, R. (n.d.). Maïskieming. Planten-in-beweging. Ontvangen 28 februari 2012, van http://plantsinmotion.bio.indiana.edu/plantmotion/earlygrowth/germination/corn/corngerm.html

Wat is een rode vloed?

VIDEO: Kom meer te weten over "rode vloed" en de gezondheid van de mens in deze video van het U.S. Integrated Ocean Observing System ®.

Schadelijke algenbloei, of HAB's, treedt op wanneer kolonies van algen en eenvoudige planten die in zee en zoet water leven uit de hand lopen terwijl ze giftige of schadelijke effecten hebben op mensen, vissen, schaaldieren, zeezoogdieren en vogels. De menselijke ziekten veroorzaakt door HAB's, hoewel zeldzaam, kunnen slopend of zelfs dodelijk zijn.

Hoewel veel mensen deze bloei 'rode vloed' noemen, geven wetenschappers de voorkeur aan de term schadelijke algenbloei. Een van de bekendste HAB's van het land vindt bijna elke zomer plaats langs de Golfkust van Florida. Deze bloei wordt, zoals veel HAB's, veroorzaakt door microscopisch kleine algen die gifstoffen produceren die vissen doden en schelpdieren gevaarlijk maken om te eten. De gifstoffen kunnen de omringende lucht ook moeilijk maken om te ademen. Zoals de naam al doet vermoeden, kleurt de bloei van algen het water vaak rood.

HAB's zijn gemeld in elke kuststaat van de VS, en hun voorkomen kan toenemen. HAB's zijn een nationaal probleem omdat ze niet alleen de gezondheid van mensen en mariene ecosystemen aantasten, maar ook de 'gezondheid' van lokale en regionale economieën.

Maar niet alle algenbloei is schadelijk. De meeste bloemen zijn zelfs gunstig omdat de kleine plantjes voedsel zijn voor dieren in de oceaan. In feite zijn ze de belangrijkste energiebron die het oceaanvoedselweb van brandstof voorziet.

Een klein percentage algen produceert echter krachtige gifstoffen die vissen, schaaldieren, zoogdieren en vogels kunnen doden en die direct of indirect ziekte kunnen veroorzaken bij mensen. HAB's omvatten ook de bloei van niet-toxische soorten die schadelijke effecten hebben op mariene ecosystemen. Wanneer bijvoorbeeld massa's algen afsterven en uiteenvallen, kan het rottingsproces de zuurstof in het water uitputten, waardoor het water zo zuurstofarm wordt dat dieren het gebied verlaten of sterven.

Wetenschappers van de National Ocean Service volgen en bestuderen dit fenomeen al een aantal jaren om te bepalen hoe de locatie van de bloemen kan worden gedetecteerd en voorspeld. Het doel is om gemeenschappen vooraf te waarschuwen, zodat ze adequaat kunnen plannen en omgaan met de nadelige milieu- en gezondheidseffecten die gepaard gaan met deze 'red-tij'-gebeurtenissen.


Mendeliaanse kruisen

Mendel trad op hybridisaties, waarbij het gaat om het paren van twee rasechte individuen met verschillende eigenschappen. In de erwt, die van nature zelfbestuivend is, wordt dit gedaan door handmatig stuifmeel over te brengen van de helmknop van een volwassen erwtenplant van de ene variëteit naar het stigma van een afzonderlijke volwassen erwtenplant van de tweede variëteit. In planten draagt ​​stuifmeel de mannelijke gameten (sperma) naar het stigma, een kleverig orgaan dat stuifmeel vasthoudt en het sperma door de stamper naar de vrouwelijke gameten (ova) eronder laat bewegen. Om te voorkomen dat de erwtenplant die stuifmeel ontving, zichzelf bevrucht en zijn resultaten vertroebelde, verwijderde Mendel zorgvuldig alle helmknoppen van de bloemen van de plant voordat ze de kans kregen om te rijpen.

Planten die werden gebruikt in kruisingen van de eerste generatie werden P . genoemd0, of ouderlijke generatie één, planten (Figuur 3). Mendel verzamelde de zaden van de P0 planten die voortkwamen uit elke kruising en die het volgende seizoen groeiden. Deze nakomelingen werden de F1, of de eerste kinderlijke (kinderlijk = nakomelingen, dochter of zoon), generatie. Zodra Mendel de kenmerken in de F1 generatie van planten, liet hij ze op natuurlijke wijze zichzelf bevruchten. Vervolgens verzamelde en kweekte hij de zaden van de F1 planten om de te produceren F2, of tweede kinderlijke, generatie. De experimenten van Mendel gingen verder dan de F2 generatie naar de F3 en F4generaties, enzovoort, maar het was de verhouding van kenmerken in de P0F1F2 generaties die het meest intrigerend waren en de basis werden voor de postulaten van Mendel.

Figuur 3. In een van zijn experimenten met overervingspatronen kruiste Mendel planten die raszuiver waren voor violette bloemkleur met planten die raszuiver waren voor witte bloemkleur (de P0 generatie). De resulterende hybriden in de F1 generatie hadden allemaal violette bloemen. in de F2 generatie had ongeveer driekwart van de planten violette bloemen en een kwart witte bloemen.


3. Rafflesia: Nog een "Lijkenbloem"

Wetenschappelijke naam: Rafflesia Arnoldi

Plaats: Indonesië

Over de fabriek: Vanwege zijn stank is de Rafflesia een andere "lijkbloem" (ik beloof dat dit de laatste plant is die hier naar een lijk ruikt). Het is uniek omdat het de grootste enkele bloem ter wereld is. Het is ook gek omdat het geen stengels, bladeren of wortels heeft, hoewel het wel een soort plant lijkt te zijn. Sommigen denken dat het met schimmels te maken heeft. De Kew Botanical Gardens-website plaatst het in de klasse Equisetopsia (gerelateerd aan paardenstaarten), maar Wikipedia plaatst het in de klasse Malphigiales (een grote categorie inclusief wilgen en vlas).

Wil je er een vinden zodat je hem in je achtertuin kunt planten? Ik ook. Deze zijn echter zeer moeilijk te vinden. Ze leven het grootste deel van hun leven als onopvallende strengen parasitair weefsel op Tetrastigma-ranken in tropische regenwouden, totdat de strengen een kleine onopvallende knop ontwikkelen, die gedurende een paar korte dagen explosief verandert in de angstaanjagende plant die je op de onderstaande afbeelding ziet.

Rafflesia arnoldii, 's werelds grootste bloem


Top 6 experimenten met osmose (met diagram)

De volgende punten belichten de top zes experimenten met osmose in planten. Enkele van de experimenten zijn: 1. Demonstratie van het fenomeen osmose 2. Demonstratie van osmose door osmoscopen 3. Demonstratie van plasmolyse en bepaling van isotone Conc. van het celsap 4. Bepaling van de osmotische druk van geïntegreerde plantenweefsels en anderen.

Experiment # 1

Demonstratie van het fenomeen osmose:

Er wordt een kleine trechter genomen en de brede mond wordt afgesloten met een stuk perkament of eiervlies. Het wordt dan volledig gevuld met 1 ml glucose-oplossing (180 06 g/liter). De neus van een pipet van 10 ml wordt met behulp van rubberen slangetjes op de steel van de trechter bevestigd.

Het niveau van de suikeroplossing wordt tot een zichtbare markering gebracht door druppel voor druppel meer suikeroplossing toe te voegen via het open uiteinde van de pipet. Het apparaat wordt dan over een beker met zuiver water geplaatst en pro­perly vastgeklemd. De toename van het gehalte aan suikeroplossing wordt met duidelijke tussenpozen opgemerkt.

Het niveau van de suikeroplossing in de pipet neemt geleidelijk toe. Het tempo van deze stijging neemt af met de tijd. Een positieve test voor glucose (een steenrode ppt.) wordt verkregen wanneer een hoeveelheid water uit de beker wordt getest met Fehling-oplossing (Mix Fehling A met 35 g GUSO4 plus 500 ml water en Fehling B met 50 g NaOH plus 173 g Rochelle-zout plus 500 ml water, in gelijke verhoudingen, voeg de testoplossing eraan toe en verwarm krachtig).

Uit dit experiment kunnen de volgende conclusies worden getrokken:

(a) De suikeroplossing stijgt in de pipet vanwege ophoping van watermoleculen die door endosmose door het semipermeabele membraan gaan.

(b) De ophoping van water verdunt de osmotische kegel van suikeroplossing. Vandaar dat de snelheid waarmee het niveau van de suikeroplossing in de pipet toeneemt met de tijd afneemt.

(c) De positieve reactie van suiker in het water van het bekerglas geeft aan dat sommige suikermoleculen ook door exosmose door het membraan zijn gekomen, aangezien het membraan niet echt semi-permeabel maar differentieel permeabel is.

Experiment # 2

Demonstratie van osmose door osmoscopen:

De binnenste inhoud van een ei wordt eruit gehaald door een klein gaatje aan het ene uiteinde ervan. Om het semipermeabele membraan te verkrijgen, wordt ongeveer een derde van de schaal ondergedompeld in conc. HCL heel voorzichtig.

Het zuur lost de schaal op (bestaande uit CaCO2) het binnenste mem­brane van het ei blootleggen. Het wordt vervolgens goed gewassen met water zonder het semipermeabele membraan te beschadigen. De neus van een pipet van één milliliter wordt tot op enige afstand door het gat van de schaal gestoken om contact met het membraan te vermijden, en verzegeld met zegellak of lacre.

Het ei wordt via het open uiteinde van de pipet gevuld met een sterke oplossing van 1 M sucrose (342,30 g/liter) en het niveau wordt op een zichtbare markering op de pipet gebracht, die wordt opgemerkt. Nu wordt het eiermembraan van de opstelling ondergedompeld in een beker met zuiver water en verticaal vastgeklemd (Figuur 3).

Na enige tijd stijgt de vloeistof in de pipet. Deze stijging neemt af met de tijd.

NB Wanneer de ei-osmoscoop in een isotoon medium wordt geplaatst, zal er geen vloeistof in de pipet stijgen in een hypotoon medium zal het niveau stijgen door endosmose en in een hypertoon medium zal het vloeistofniveau dalen door exosmose.

Een grote aardappelknol wordt eerst gevild en in een rechthoekige en geschubde vorm gesneden. Een eenvoudige put wordt gemaakt in het midden van de knol met behulp van een kurkboorder en scalpel zonder de andere kant te doorboren. Deze aardappelosmoscoop wordt vervolgens voor de helft gevuld met 1 M sucrose-oplossing, het niveau is gemarkeerd met een speld en wordt in een petrischaal met zuiver water geplaatst.

Na verloop van tijd stijgt het vloeistofniveau in de osmoscoop.

Zoals in Ext. 3 (ik). Hier fungeert het aardappelweefsel als een semipermeabel membraan.

NB De aardappelosmoscoop kan in isotone, hypotone en hypertone oplossingen worden geplaatst en de overeenkomstige veranderingen in het vloeistofniveau in de osmoscoop kunnen worden waargenomen.

Experiment # 3

Demonstratie van plasmolyse en bepaling van isotone conc. van het celsap:

Epidermale peelings van het onderoppervlak van Rhoeo- of Tradescantia-bladeren worden geschikt gebruikt in dit experiment omdat het protoplasma van de cellen duidelijk zichtbaar is vanwege de aanwezigheid van anthocyaninepigment. Spirogyra-filamenten kunnen ook in dit experiment worden gebruikt.

0,15, 0,20, 0,25, 0,30, 0,35 en 0,40 M sucroseoplossingen worden bereid uit 1 M oplossing. 2 ml van elk wordt in afzonderlijke horlogeglazen gegoten en een paar schillen worden in elk van de oplossingen ondergedompeld.

Na ongeveer 40-50 minuten wordt uit elke oplossing een peeling genomen, in dezelfde oplossing gemonteerd en onder de microscoop onderzocht om het aantal cellen te bestuderen dat onder het gezichtsveld is geplasmolyseerd.

Er worden twee concentraties gevonden, een waarbij de plas­molyse net is begonnen (d.w.z. iets sterker dan het celsap) en de volgende lagere concentratie die de cellen net niet plasmolyseert.

Het gemiddelde van de twee concentraties geeft ongeveer de equivalente concentratie van het celsap. De mate van plasmolyse (zowel krimp van protoplasma als aantal geplasmolyseerde cellen) varieert ook in verschillende molaire oplossingen.

Plasmolyse van de cellen komt niet voor in molaire oplossingen van sucrose die hypotoon en isotoon zijn voor het celsap. Plasmolyse treedt alleen op bij hypertone oplossingen. Beginnende plasmolyse vindt plaats bij een concentratie die net boven de isotone concentratie ligt.

NB Het is niet mogelijk om de exacte concentratie te bepalen waarbij beginnende plasmolyse (turgordruk nul) optreedt. Dus het gemiddelde van de bovengenoemde concentraties wordt genomen als isotone concentratie. In het geval van individuele cellen is deze methode voor het bepalen van isotone conc. moet worden aangenomen.

In het geval van geïntegreerd plantenweefsel kan de isotone concentratie worden verhinderd door het gemiddelde te nemen van twee concentraties suikeroplossing waar plasmolyse net is begonnen en waar cent procent cellen geplasmolyseerd zijn. Deze concentratie kan direct worden bepaald aan de hand van een curve (percentage van geplasmolyseerde cellen/concentraties van suikeroplossingen) waarbij de concentratie isotoon is waarbij 50% van de cel is geplasmolyseerd (Figuur 4).

Wanneer de geplasmolyseerde cellen in zuiver water worden geplaatst, vindt deplasmolyse plaats waardoor het protoplasma zijn oorspronkelijke vorm terugkrijgt. Als de concentratie van de suikeroplossing te sterk is, zal er geen deplasmolyse plaatsvinden, wat wijst op de dood van het protoplasma.

Dit experiment kan worden uitgevoerd met gekleurde bloemblaadjes, draadalgen zoals Spirogyra, enz. Het patroon van krimp van protoplasma is een plantensoort.

Experiment # 4

Bepaling van de osmotische druk van geïntegreerde plantenweefsels:

Lagere epi­dermale peelings van Rhoeo, Tradescantia of draadalgen zoals Spirogyra kunnen voor dit experiment worden gebruikt. De isotone concentratie kan worden bepaald, zoals in Expt. 3 (ii).

Osmotische druk van de cellen wordt berekend met een van de volgende formules:

De aldus bepaalde osmotische druk geeft de geschatte waarde omdat de nauwkeurige concentratie van het celsap om verschillende redenen niet kan worden bepaald met behulp van de plasmolytische methode.

Enkele van de belangrijke bronnen van fouten zijn de volgende:

(a) Voor normale en gewone cellen is de werkelijke isotone conc. van de cellen kan alleen worden verkregen door te corrigeren voor de veranderingen in volume van de cellen geassocieerd met veranderingen in osmotische conc. (zie NB).

(b) Adhesie van protoplasma aan de celwand in bepaalde celtypes kan leiden tot overmatige osmotische drukwaarden. Om een ​​nauwkeurige osmotische druk te krijgen, moet de berekende druk worden vermenigvuldigd met de verhouding van het normale volume tot het minimale volume van de cel, d.w.z. in het stadium van plasmolyse (zie N.B.).

(c) De exacte bepaling van beginnende plasmolyse is moeilijk omdat het begin van de scheiding van het protoplasma van zijn wand niet duidelijk kan worden waargenomen.

(d) De suikeroplossingen kunnen de doorlaatbaarheid van de celwand veranderen en aanzienlijke fouten veroorzaken.

(e) De celwand kan ondoordringbaar zijn voor de plasmolyserende externe oplossingen en kan verdraaid raken.

(f) Abnormale omstandigheden van het protoplasma kunnen het gevolg zijn van mechanische schokken als gevolg van het snijden of isoleren van weefsels.

(g) De intacte cellen kunnen nadelig worden beïnvloed door het sap dat vrijkomt uit de gesneden cellen.

(h) Elastische aard van de celwand kan leiden tot onnauwkeurige resultaten.

NB De volumecorrectie wordt als volgt uitgevoerd:

C = conc. in normale toestand,

Cl = conc. waar plasmolyse net is begonnen,

V = volume bij normale toestand (geïntegreerde cellen),

Vl = volume bij conc. waar plasmolyse net is begonnen

Aangezien het meten van het volume onmogelijk is vanwege de onregelmatige vorm van de cellen, kan het gemiddelde oppervlak (lengte x breedte) in aanmerking worden genomen.

Osmotische druk kan ook worden bepaald door cryoscopische methode.

De volgende vergelijking met betrekking tot vriespuntverlaging en osmotische druk kan worden gebruikt:

Waarbij A de vriespuntverlaging is.

A wordt als volgt bepaald:

1 molaire oplossing van een niet-elektrolyt bevriest bij een temperatuur van -1,86°C en de theoretische OP is 22,4 atmosfeer. Voor daadwerkelijke bepaling van A van celsap, moet het celsap in eerste instantie worden geëxtraheerd door de cellen te doden door bevriezing.

Het vat met het experimentele weefsel is omgeven en bedekt met een mengsel van ijs en keukenzout. Het bevroren weefsel laat men vervolgens smelten. Het sap kan nu eenvoudig met een handpers worden geëxtraheerd. Het vriespunt van het gemacereerde materiaal kan worden bepaald.

Het molecuulgewicht van een stof kan worden berekend met de volgende formule, als de sterkte van de oplossing in procenten of g/liter, de osmotische druk en de kamertemperatuur bekend zijn.

R = universele gasconstante (0,082)

T = 273 + laboratoriumtemperatuur, P osmotische druk,

M= molecuulgewicht van de stof.

Geïntegreerd weefsel zoals aardappelknol kan ook worden gebruikt voor dit experiment van osmotische drukbepaling. Hier kan de isotone concentratie worden verkregen door de suikerconcentratie als isotoon te nemen, waarbij geen gewichtsverandering plaatsvindt.

Experiment # 5

Bepaling van de gemiddelde zuigdruk of diffusiedruktekort van plantencellen:

20 ml elk van 0,15, 0-20, 0-25, 0-30, 0,35 en 0,40 molaire concentraties worden bereid uit 1 M voorraadoplossing van sucrose. Alle verzonken perifere lagen van een verse aardappelknol of bietenwortel worden verwijderd en in stukken van 1 cm x 2 cm gesneden met behulp van een kurkboor en een scalpel.

Elk stuk wordt gewassen in gedestilleerd water, goed geblot, gewogen (aanvankelijk gewicht) en overgebracht naar elk van de gesorteerde oplossingen van sucrose. Deze blijven dan ongeveer een uur staan. Na de gestelde termijn worden de stukken eruit gehaald, zorgvuldig geblot en opnieuw gewogen (eindgewicht).

Op bovenstaande manier wordt de osmotische concentratie van volledig gezwollen aardappelknolweefsel (opgezwollen gemaakt door het weefsel vooraf een half uur in water te houden) en die van gedeeltelijk uitgedroogd weefsel (gedeeltelijk uitgedroogd gemaakt door het weefsel een half uur in de open lucht te houden) ) worden afzonderlijk bepaald.

Het verschil tussen de osmotische druk verkregen in het geval van gedehydrateerde en normale weefsels en die tussen normale en gezwollen weefsels geeft de DPD), van respectievelijk gedehydrateerde en normale weefsels.

De procentuele toename of afname in gewicht van het weefsel werd bepaald voor elke concentratie sucrose-oplossing. De resultaten zijn uitgezet op een ruitjespapier, waarbij de suikerconcentraties als abscis zijn genomen en de procentuele verandering in gewicht als ordinaat. De concentratie van sucrose die overeenkomt met geen verandering in gewicht wordt uit de grafiek gevonden.

Deze waarde geeft de osmotische concentratie van het celsap wanneer de osmotische druk gelijk is aan de zuigdruk (D.P.D.), waarbij de turgourdruk nul is. De DPD wordt berekend door de formule van de osmotische druk toe te passen die wordt gegeven in Expt. 3 (iv). Ook kunnen de nodige temperatuur- en volumecorrecties worden aangebracht.

De DPD wordt hier indirect verkregen omdat de D.P.D. van een oplossing is gelijk aan zijn osmotische druk bij de isotone concentratie van het celsap, d.w.z. op een evenwichtspunt.

Deze waarde wordt verkregen uit de molaire sterkte van de sucrose-oplossing waarmee cellen of weefsels in evenwicht komen bij beginnende plasmolyse, en wanneer het celvolume op het relatieve minimum is als gevolg van eliminatie van turgordruk veroorzaakt door exosmose van water.

De zuigdrukwaarden kunnen alleen identiek zijn aan de osmotische drukwaarden als de cellen zich aanvankelijk bij de beginnende plas­molyse bevinden.

Experiment # 6

Bepaling van de turgourdruk van plantenweefsel:

De isotone concentratie van een geschikt plantenweefsel wordt bepaald volgens Expt. 3 (iii) of 3 (v), afhankelijk van wat handig is. Eerst wordt de osmotische druk van het weefsel bepaald (die hier gelijk is aan de zuigdruk­sure of DPD, waarbij de turgordruk nul is). Dit wordt genomen als de osmotische druk (P) van het celsap in dat stadium.

Het weefsel wordt vervolgens in zuiver water bewaard om de turgordruk te laten toenemen. Na 10 minuten wordt het weefsel verwijderd en wordt de osmotische druk (zuigdruk of DPD, waarbij turgour nul is) op soortgelijke wijze bepaald. Het proces wordt herhaald totdat de zuigdruk een constante waarde bereikt en overeenkomstige zuigdrukken worden geregistreerd.

Turgourdruk wordt verkregen door de formule,

T = P —S waarbij P = osmotische druk van het celsap (als constant genomen), S = zuigdruk op verschillende tijdsintervallen, en T = turgordruk op een bepaald tijdstip. Dus het verschil tussen de initiële osmotische druk (P) en die bepaald bij elke 10 minuten interval (S) geeft de snelheid van toename van de turgordruk (T).

Wanneer een oplossing is opgesloten in een semipermeabel membraan dat in water is ondergedompeld, zal er een netto beweging van watermoleculen door het membraan zijn, omdat de diffusiedruk van watermoleculen op water buiten groter is dan die van de oplossing binnen het membraan.

De binnenwaartse doorgang van water ontwikkelt dus turgordruk in de cel. Naarmate de turgordruk toeneemt, daalt de zuigdruk (D.P.D.). In het onderhavige experiment is de initiële osmotische druk van de cel genomen als zijn maximale osmotische druk en bij isotone concentratie van de externe oplossing is dit gelijk aan de D.P.D. van de cel (turgor is nul).

Bij weer onderdompeling in zuiver water neemt de turgourdruk toe door endosmose en als gevolg daarvan daalt de zuigdruk. De osmotische druk die in dit stadium wordt bepaald met behulp van de isotone concentratie (die lager moet zijn dan de beginwaarde) geeft de zuigdruk.

Deze waarde afgetrokken van de initiële osmotische drukwaarde, geeft turgordruk bij die specifieke zuigdruk van het weefsel. Als de maximale turgordruk van de cel is bereikt, vindt er geen verandering in de zuigdruk meer plaats.


Eenvoudige praktische plantenwetenschappelijke experimenten voor kinderen

Wat hebben planten nodig om te groeien?? Waarom zet je geen wetenschappelijk experiment op om de vraag te beantwoorden.

Kan een plant overleven op sinaasappelsap in plaats van op water?? Kies twee planten van dezelfde soort twee containers, een gevuld met water, de andere met sinaasappelsap. Zet een plant in elke container, observeer en noteer het groeiverschil.

Hier is nog een plantengroei-experiment, maar dit bericht legde meer in detail uit over het schrijven van hypothesen en hoe ze plantengroeigegevens registreerden.

Om wat dieper op het onderwerp in te gaan, kun je vragen hoe lang kunnen verschillende planten overleven zonder zonlicht en water?? Ontwerp een experiment waarbij je planten van verschillende groottes in een zwarte kamer plaatst en geef ze geen water. Maar ga wel dagelijks hun status controleren en noteer de gegevens. Zie je verschil tussen de planten van verschillende groottes?

Hoe groeien planten onder kunstlicht? vergeleken met natuurlicht? Kun je het experiment zelf ontwerpen?

Dit is een eenvoudig experiment het vergelijken van de groei van verschillende planten. Je kunt het gemakkelijk in je keuken doen.

Hoe planten water opnemen? Dit is een eenvoudig maar leuk experiment waar jonge kinderen dol op zijn.

Terwijl het laatste experiment laat zien hoe water door de bladeren reist, laat dit zien hoe water door bloemen reist.

Na de laatste twee experimenten heb je deze nodig om uitleggen waarom planten water nodig hebben.

Hoe snel groeit een plant?? Je vindt ook een gratis afdrukbaar opnameblad op die post.

Nadat je hebt geleerd wat planten nodig hebben om te groeien, kun je zoete aardappel kweken in je wetenschapsbureau of keukenwetenschappelijk laboratorium. Kinderen zullen de veranderingen in de loop van de tijd zien en de spruiten en wortels bekijken.

Voor oudere kinderen kunt u maak een 3D plantencel, en bespreek het verschil tussen plantencellen en dierlijke cellen.

Ik hoop dat je deze wetenschappelijke experimenten leuk vindt. Thuis wetenschap doen is niet alleen voor de lol, het is ook bedoeld om de interesse van kinderen voor wetenschap te cultiveren en hen te helpen wetenschappelijk denkvermogen te ontwikkelen. Ik moedig je aan om de . te volgen wetenschappelijke stappen terwijl je met kinderen aan deze leuke activiteiten werkt. Ik heb de stappen geschetst en dit opnameblad voor wetenschappelijke experimenten ontwikkeld. Ik raad het ten zeerste aan om het te gebruiken, zelfs met jonge kinderen. Ze kunnen tekeningen maken als ze niet kunnen schrijven. Het is het proces dat belangrijk is, te beginnen met vragen en hypothese.

Op zoek naar meer gemakkelijke en leuke wetenschappelijke activiteiten voor kinderen om over planten te leren? Uitchecken 9 Zaadwetenschappelijke experimenten voor kinderen. Als je naar buiten gaat, vind je deze 10 plantenidentificatie-apps behulpzaam. Deze ga je zeker leuk vinden 45 wetenschappelijke experimenten voor kinderen om de levenscyclus van planten te leren.


Lab 4 plantenpigmenten

Invoering:
Het doel van dit laboratoriumexperiment was om plantpigmenten te scheiden met behulp van papierchromatografie en om de snelheid van fotosynthese in geïsoleerde chloroplasten te meten. Door capillaire werking beweegt het oplosmiddel het papier omhoog waardoor de pigmenten op bepaalde afstanden zichtbaar worden.

De stoffen die zichtbaar zijn op het papier worden pigmenten genoemd. Chlorofyl a is het belangrijkste pigment dat ongeveer 75% van de pigmentatie in planten uitmaakt. Chlorofyl b maakt ongeveer 25% van de pigmentatie uit. En carotenen en xanthofylen zijn accessoire pigmenten die de rest van de pigmentatie vormen. Van de pigmenten is caroteen het meest oplosbaar en wordt daardoor het verst door het oplosmiddel gedragen. Het papier zal een spectrum van de pigmenten in de spinaziebladeren vertonen. Met behulp van de formule Rf kan men de relatie bepalen tussen de afstand die het oplosmiddel aflegde en de afstand die het pigment aflegde.


Rf=afstand l2igment gemigreerd (mm) afstand oplosmiddel front gemigreerd

Licht maakt deel uit van een continuüm van stralings- of energiegolven. De energie van zichtbaar licht wordt gebruikt in het fotosyntheseproces. Licht wordt geabsorbeerd in de bladpigmenten, elektronen binnen elk fotosysteem worden gestimuleerd tot een hoger energieniveau om ATP te produceren en NADP en NADPH te verminderen. De ATP wordt vervolgens gebruikt bij koolstoffixatie. Dit is de opname van CO2 in organische moleculen.
Om de lichttransmissie in chloroplasten te meten zal een spectrofotometer worden gebruikt. De reden achter het meten van de lichttransmissie is om de snelheid van fotosynthese in de chloroplasten te berekenen. Een oplossing genaamd DPIP zal worden gebruikt in plaats van NADP om de kleurverandering van de chloroplastoplossingen te beoordelen. Deze techniek staat bekend als kleurstofreductie en test de hypothese dat licht en chloroplasten nodig zijn om lichtreacties te laten plaatsvinden.

Hypothese:
In dit experiment wordt verondersteld dat de cuvet met gekookte chloroplasten en de cuvet die in het donker wordt bewaard en die ongekookte chloroplasten bevat, zeer kleine veranderingen in lichttransmissie zullen hebben, terwijl de cuvet die ongekookte chloroplasten bevat die aan licht zijn blootgesteld een steeds hoger % transmissie zal hebben in de loop van de tijd.

Materialen en methodes:
Laboratorium 4A:
De materialen die in dit gedeelte van het laboratorium werden gebruikt, waren: filtreerpapier, glazen flesje, een kleine hoeveelheid oplosmiddel, een kwart en spinaziebladeren. De eerste stap was om een ​​punt aan het ene uiteinde van het filtreerpapier te snijden en een potloodlijn op 1,5 cm van de punt van dit punt te tekenen. Vervolgens werd een bladspinazie op de strook papier gelegd en met een kwart over het potloodstreepje omgerold. This gives a green line across the paper, which contains the pigments of the leave. Then the strip of paper was placed into the vial with the point down in the bottom. When the pigment reached the point 1 cm from the top of the vial then it was removed. The solvent front was then quickly marked with a pencil and then each pigment front was marked as well. From the distance the pigment traveled and the distance the solvent traveled the Rf value was calculated.

Lab 4B:
The materials used in this lab were: a spectrophotometer, 4 cuvettes, phosphate buffer, distilled water, boiled chloroplasts, unboiled chloroplasts, and DPIP .First the cuvettes were labeled 1-4 and cleaned with lens paper because even the oil from your hands can affect the transmittance of light through the cuvette. Cuvette 2 was then wrapped with foil to keep the contents in the dark. Next 1 ml of phosphate buffer was added to all four cuvettes, 4ml of distilled water was added to cuvette 1, 3rn1 of distilled water was added to cuvettes 2,3, and 4, and Iml of DPIP was added to cuvettes 2,3, and 4. Then 3 drops of unboiled chloroplasts were added to cuvette 1, it was covered with parafilm, placed into the spectrophotometer, and set to 100% transmittance. This cuvette was used to recalibrate between readings as well. Three drops of unboiled chloroplasts were placed in cuvette 2 and 3, and three drops of boiled chloroplasts were placed in cuvette 4. The cuvettes were then covered with parafilm. Each was placed in the spectrophotometer and the % transmittance of each, every five minutes for 15 minutes, was recorded.


Food waste – bruising and browning

All we see is a piece of bruised fruit on the supermarket shelf – but what are the mechanisms behind bruising and browning, and how does it protect damaged plants against both bacterial and fungal disease?

Making sure that food reaches the consumer in good condition is both big business and an environmental issue.

Catechol oxidase activity may be of huge economic importance. It has been estimated that half the world’s fruit and vegetable crop is lost due to post-harvest browning reactions due to the enzyme.

Every piece of food has an environmental impact, and the fertilisers and energy used to produce it are wasted if it is thrown away uneaten. Uneaten food is also a financial loss to the producer or retailer.

This project starter contains ideas for investigating the enzyme activity in plant tissues, suitable for Advanced Higher Biology investigations and EPQs.

Background information

Catechol oxidase (also called polyphenoloxidase) is an enzyme found in a wide variety of plants. It is responsible for the darkening observed when many fruits or vegetables are cut or bruised.

Catechol oxidase catalyses the reaction of catechol, which is colourless, to the yellow compound, ortho-quinone (o-quinone). o-quinone then reacts with oxygen in the air to form brown-black compounds called melanins.

Catechol is present in small quantities in the vacuoles of cells of many plant tissues. Catechol oxidase is present in the cell cytoplasm.

If the plant tissues are damaged, the catechol is released and the enzyme converts the catechol to ortho-quinone, which is a natural antiseptic.

Catechol oxidase therefore has a role in plant defence mechanisms, helping to protect damaged plants against both bacterial and fungal disease.

It has been suggested that the quantity of catechol oxidase produced by a plant may be related to its susceptibility to fungal infection.

Catechol oxidase activity is also of economic importance. It has been estimated that half the world’s fruit and vegetable crop is lost due to post-harvest browning reactions due to the enzyme.

Verder lezen
    . WRAP is a UK charity that focuses on the sustainable use of resources. They have a particular focus on understanding the causes of food waste and hence reducing it. . This article from Discover Magazine describes a new transgenic variety of apple that ‘turns off’ the gene that controls the browning process seen when an apple is cut and exposed to the air (Discover Magazine, February 18, 2015). . Researchers from Harper Adams University are identifying the genes that make certain varieties of lettuce more susceptible to browning than others. They hope this will enable them to breed new varieties that will take longer to turn brown, especially in bagged salad mixes.
  • Writtle College has a well-respected centre for Post-Harvest Technology. Their research gives an insight into the key issues currently being addressed by UK businesses and research.
Practical Investigations – step-by-step protocols

We’ve put together step-by-step protocols for you to use for a practical investigation on this topic.


Moonflower Pests

These plant pests suck the juices from moonflowers, leaving a sticky residue that draws ants. If you see these green, red, black or orangish insects, wash them off with a strong spray of water from your garden hose or spray with an insecticidal soap. Introducing natural predators that eat aphids into your garden, such as lady beetles and wasps, can also help.

Known for their metallic green bodies and copperish wing covers, Japanese beetles destroy plants by skeletonizing leaves and buds. Wear garden gloves to pick off these pests and drop them into a bucket of soapy water.

Tomato and tobacco hornworms, the larvae of sphinx or hawk moths, are large enough to see easily. These pests have soft, green bodies with white stripes. Wear gloves to pick them and step on them or drop them into a bucket of soapy water. If you see hornworms with white, rice-sized objects on their backs, leave them alone. They're under attack by the larvae of a parasitic wasp and will die. Gebruik niet Bacillus thuringiensis kurstaki (Btk) on your plants. It's a biological control that kills the larvae of moths and butterflies, but it can kill desirable butterflies.

Leafminers sometimes bore under the surface of moonflower leaves, leaving irregular lines. You may spot them in the larval stage when they look like yellow maggots, or in the adult stage when they look like little yellow and black flies. While they don't usually cause moonflower plants to die, they can ruin their appearance. Cut off infected foliage and discard it.