Informatie

12.3: Deel 1 - Pigmenten - Biologie

12.3: Deel 1 - Pigmenten - Biologie


We are searching data for your request:

Forums and discussions:
Manuals and reference books:
Data from registers:
Wait the end of the search in all databases.
Upon completion, a link will appear to access the found materials.

het molecuul chlorofyl a heeft een bepaalde vorm. Verander de vorm van dat molecuul door slechts twee atomen toe te voegen, waardoor het chlorofyl ben het licht dat wordt teruggekaatst is nu minder blauw en meer geel.

Wat heeft dit met fotosynthese te maken? Organismen die aan fotosynthese doen, doen dit door licht te absorberen en om te zetten in bruikbare energie. Dit geabsorbeerde licht is niet teruggekaatst. Dit betekent dat de kleur van het (de) pigment(en) dat het organisme heeft, de golflengten van het licht bepaalt dat het organisme kan gebruiken. Planten hebben bijvoorbeeld twee soorten chlorofylmoleculen, chlorofyl a & b. Elk van deze reflecteert groen licht, wat betekent dat groen licht niet kan worden gebruikt voor fotosynthese. Om wat meer van het spectrum vast te leggen, hebben planten aanvullende pigmenten, carotenoïden genaamd, die geel, oranje en rood licht reflecteren en een deel van het groene deel van het spectrum absorberen.

Chlorofylen hebben de neiging om de meeste andere pigmenten in planten te maskeren, dus om deze andere pigmenten te zien, moeten we ze scheiden. U gebruikt een proces genaamd dunnelaagchromatografie om pigmenten uit bladeren te halen en ze vervolgens op te lossen in een oplosmiddel.

Dunnelaagchromatografie (TLC)

Opmerking

Hieronder vindt u een lijst met voorgestelde materialen. Spinazie wordt aanbevolen voor de bladeren, omdat het gemakkelijk te verkrijgen is en rijk is aan pigment. Overweeg echter om de pigmenten in verschillende soorten bladeren te vergelijken voor een interessanter experiment.

Benodigde materialen:

  • Vijzel en stamper
  • Zand of soortgelijk materiaal
  • Zachte bladeren (bijv. spinazie)
  • Extractieoplosmiddel: 3 delen propanon op 2 delen ethoxyethaan (diethylether)
  • capillaire buizen
  • Reageerbuisjes en kurken
  • TLC-papierstrips (op maat gesneden van reageerbuis - ongeveer 1 cm minder lang)
  • Chromatografie-oplosmiddel: 5 delen cyclohexaan, 3 delen propanon en 2 delen ethoxyethaan
  • Potlood
  • Tang

Procedure voor dunnelaagchromatografie

  1. De pigmenten extraheren.
    1. Bereid je TLC-strip voor door met potlood een lijn over het papier te trekken op 2 cm van de onderkant van de strip en leg apart. Belangrijke notitie: Behandel de strip zo min mogelijk zodat olie uit uw handen het proces niet hindert.
    2. Doe onder een afzuigkap of in een goed geventileerde ruimte een deel van de bladeren in de mortel met een beetje zand (om het weefsel uit elkaar te halen) en wat extractiemiddel.
    3. Maal de bladeren met de stamper tot ze tot pap zijn geworden. Mogelijk moet u meer extractiemiddel toevoegen als het in het bladweefsel trekt.
  2. Dunnelaagchromatografie.
    1. Trek de brij naar één kant van de mortel. Plaats het uiteinde van een fijne capillaire buis in de vloeistof en breng de vloeistof in de buis over naar een punt in het midden van uw lijn.
    2. Herhaal dit proces, waarbij je meer vloeistof uit de mortel trekt, totdat je een kleine, geconcentreerde pigmentvlek hebt. Voor het beste resultaat houdt u de stip zo geconcentreerd mogelijk op één plaats.
    3. Voeg onder een afzuigkap 1 cm chromatografieoplosmiddel toe aan uw reageerbuis en plaats dit in een reageerbuisrek (label uw buisje als meerdere mensen hetzelfde rek gebruiken).
    4. Voeg je strip toe aan de tube met de lijn die je met potlood hebt getekend ongeveer 1 cm boven het niveau van het oplosmiddel, en kurk de tube vervolgens af.
  3. Rf-waarden berekenen en polariteit bepalen.
    1. Controleer regelmatig uw TLC-strip en neem een ​​potlood mee. Wanneer het oplosmiddel ongeveer 1 cm van de bovenkant van de strip door de TLC-strip is gekomen, haalt u de strip uit de reageerbuis en tekent u een lijn in potlood aan de rand van het oplosmiddelfront.
    2. Laat de strip drogen en meet vervolgens de afstand van de originele lijn die u tekende (waar het pigment begon) tot het oplosmiddelfront.
    3. Meet vervolgens de afstand van waar het pigment begon tot het verste punt dat elk pigment heeft afgelegd.
    4. Bereken de Rf-waarde van elk pigment: deel de afstand die het pigment heeft afgelegd door de afstand die het oplosmiddel heeft afgelegd.

Zowel het chromatografie-oplosmiddel als het extractiesolent dat u hebt gebruikt, zijn: niet-polair verbindingen, wat betekent dat ze geen resterende ladingen hebben. Apolaire verbindingen lossen goed op in apolaire oplossingen, terwijl polaire verbindingen dat niet doen. Pigmenten die meer niet-polair zijn, zullen beter oplossen in dit oplosmiddel en zich verder door de strip verplaatsen. Meer polair pigmenten met restladingen (zoals water) zullen niet veel interactie hebben met het oplosmiddel en blijven dichter bij de onderkant van de strip. Hoge Rf-waarden van TLC met een niet-polair oplosmiddel betekent dat het pigment meer niet-polair is. Lagere Rf-waarden betekenen dat het pigment meer polair is.

Teken of plak je TLC-strip en label zoveel pigmenten als je kunt (zie de volgende pagina voor meer informatie over pigmenten). Noteer de Rf-waarden van elk pigment naast het label.

Welk pigment is meer polair, chlorofyl a of chlorofyl b? Hoe weet je dat?

Hoeveel pigmenten waren aanwezig in uw bladmonster?

Welke pigmenten waren het meest apolair (minst polair, hoogste Rf-waarden)?

Als er polaire pigmenten in de bladeren zaten en je zou een niet-polair oplosmiddel gebruiken om de pigmenten uit het blad te halen, zouden ze dan oplossen en aanwezig zijn in de oplossing die je gebruikte om je TLC-experiment uit te voeren? Hoe kan dit uw resultaten beïnvloeden?


Bekijk de video: Bio I Ch. Complex Inheritance Part 2 Multiple Alleles, X linked, and Environmental Effects (Februari 2023).